铁强化牛血清，养细胞更出色

铁对体外的细胞培养非常重要(1)(12)。它作为一些酶的辅因子，参与了细胞的多种生理功能，其中至少有如下三个重要方面：

01、参与细胞的呼吸代谢

线粒体是细胞氧化代谢的部位和能量中枢，其中，线粒体膜上的琥珀酸脱氢酶扮演着关键角色。铁即是琥珀酸脱氢酶的一部分，参与细胞的氧化代谢和能量生成。

图. 铁(Fe)位于铁卟啉的中心

02、保护细胞不受氧化损伤

铁作为铁卟啉结构的核心，是过氧化氢酶和过氧化物酶等酶的关键组成部分，能消除过氧化氢和酚类、胺类、醛类的毒性，使细胞免于遭受H2O?等过氧化物带来的损伤，为细胞提供抗氧化防御，使细胞更健康。

03、提高细胞密度和存活率

铁是细胞增殖所必需的元素。如果没有铁，细胞就不能在增殖时从G1期进入到S期（2,3）。缺铁会导致细胞凋亡和死亡（4）。如果缺乏铁， 细胞复制时DNA合成将受到影响。因为铁是RNA聚合酶所必需（11），它也是核糖核苷酸还原酶的组成部分（5）。而核糖核苷酸还原酶是细胞在合成DNA过程中，将核糖核苷酸转变成脱氧核糖核苷酸的限速酶（6）。已知有药厂已开发铁配方**，用于加入到细胞培养基中，以提高细胞密度和存活（10）。

对于无血清培养基，铁也是一种重要的补充剂。有研究显示，在无血清培养基中，铁能诱导LI 210细胞生长。并且它不依赖转铁蛋白的存在（7）。

在将铁强化小牛血清作为胎牛血清（FCS）的替代品方面，从1988年以来，已陆续有一些相关报道，如对于一些细胞系，铁强化小牛血清在促细胞生长或克隆率方面，等效或优于FCS(13)。对于牛肌源细胞，在DMEM/M199培养基中添加铁强化小牛血清，在细胞增殖速率方面，优于胎牛血清、新生牛血清和马血清（8）。在CHO细胞的HGPRT基因突变试验中（该实验常用于化学物的遗传毒性检测），在倍增时间和克隆率方面，补铁型小牛血清和FCS没有显著差异，补铁型小牛血清完全可以取代FCS，从而降低实验成本（9）。

值得指出的是，铁强化牛血清的使用效果与细胞类型和所用基础培养基关系密切。在一项细胞长期生长的比较研究中，发现铁强化小牛血清性能不如FCS，但优于小牛血清（14）。

因此，使用铁强化牛血清，可以预期，其性能必然优于普通牛血清。目前，Ausbian?系列牛血清已增添新成员，即Ausbian?进口铁强化新生牛血清，国内备有现货，可为您的细胞培养竭诚服务。

下面，我们对Ausbian?进口铁强化新生牛血清作一介绍。

一、产品信息

中文品名：铁强化新生牛血清

英文品名：Newborn Calf Serum（Iron Fortified）

注：英文品名以质控证书为准

品牌：Ausbian

货号：VS500N(F)

规格：500ml/瓶

批号：见包装标签

用途：用于细胞培养

二、产品描述及服务

Ausbian?铁强化新生牛血清产自澳洲，是在当地政府兽医部门的监督下从注册的出口屠场采集，符合国际动物协会要求。

血清经0.22μm滤膜过滤，确保血清品质，确保无细菌和支原体污染。滤膜材料符合美国药典规定的生物安全性标准。

添加微量元素铁（目前批次铁浓度为226mg/dl），满足细胞对铁离子需求，促进细胞生长。

极低内毒素。内毒素＜5EU/ml（目前批次为1.71EU/ml），使细胞更健康，使客户做实验更加顺利。

血清经严格检测，每个批次提供完整的质控报告。检测项目包括铁含量、pH值、渗透压、血红蛋白、总蛋白、无菌检查、支原体检查、病毒检查、促细胞生长试验（细胞密度、克隆率、倍增时间）等。

保证全程冷链运输，国外加干冰进中国后直接在海关进冷冻库，不出现冻融现象，保证质量不受影响，因为我们是在海关备案，有相关文件，正规途径进口，如果不按正规途径进血清，会进常温库，血清冻融导致实验问题，或者同一批货周围的血清和中间的血清质量差异明显。

Viansaga的防伪标签，保证不会有假货。保证了实验的顺利，也避免了假货造成的成本损失。

免费专业帮助，汇集近二十年，千万个血清用户细胞培养经验，为各种细胞培养提供问题梳理分析，解决方案参考。

Ausbian品牌拥有全系列血清产品线：特级胎牛血清、细胞治疗专用胎牛血清（货号：WS500T(红点)），透析胎牛血清 （货号：VS500TZ   ）等多系列产品，服务更专业更精准。

参考文献：

1. Barnes, D., and Sato, G. Serum-free cell culture: a unifying approach. Cell. 1980, 22:649-655

2. Lederman, H.M.; Cohen, A.; Lee, J.W.; Freedman, M.H.; Gelfand, E.W. Deferoxamine: A reversible s-phase inhibitor of human lymphocyte proliferation. Blood. 1984, 64, 748–753.

3. Yu, Y.; Kovacevic, Z.; Richardson, D.R. Tuning cell cycle regulation with an iron key. Cell Cycle. 2007, 6, 1982–1994.

4. Hileti, D.; Panayiotidis, P.; Hoffbrand, A.V. Iron chelators induce apoptosis in proliferating cells. Br. J. Haematol. 1995, 89, 181–187.

5. Hershko, C. Control of disease by selective iron depletion: A novel therapeutic strategy utilizing iron chelators. Baillieres Clin. Haematol. 1994, 7, 965–1000.

6. Thelander, L.; Reichard, P. Reduction of ribonucleotides. Annu. Rev. Biochem. 1979, 48,133–158.

7. Paul Basset, Yves Quesneau, Jean Zwiller. Iron-induced LI 210 Cell Growth: Evidence of a Transferrin-independent Iron Transport. Cancer Research. 1986,46:1644-1647

8. WOODS, T.L.; SMITH, C.W.; ZEECE, M.G.; JONES, S.J. Conditions for the culture of bovine embryonic myogenic cells. Tissue and Cell . 1997.29(2): 207-215

9. Oberly T J , Rexroat M A , Richardson K K . Iron-supplemented bovine serum as an alternative to fetal bovine serum in the CHO/HGPRT mutation assay[J]. Mutation Research Letters, 1990, 244(2):105-109.

10. 添加铁改善细胞培养.申请号：CN201280051721.4. 国家/省市：US(美国) 公开号：CN103890166A，见**之星检索系统

11. Shoji, A., and E. Ozawa. Necessity of transferrin for RNA synthesis in chick myotubes, J. Cell. Physiol.1986, 127, 349-356.

12. Hyclone Laboratories, Inc. Transferrin (Iron): An important requirement of all cultured cells, Art to Science, 1987, 6, 1-7.

13. Hyclone Laboratories, Inc. Iron-supplemented bovine calf serum: An excellent substitute for fetal bovine serum. Art to Science. 1988, 7:1-6.

14. Chih-Yeu Fang, Chung-Chun Wu, Chia-Lang Fang, Wei-Yu Chen , Chi-Long Chen.   Long-term growth comparison studies of FBS and FBS alternatives in six head and neck cell lines. PLoS One. 2017 Jun 7;12(6):e0178960.